Информация о гранте

Грант РНФ 23-26-00213

Продуктивность корней женьшеня в зависимости от состава микробного сообщества ризосферы пологом леса и на плантации.

Год начала: 2023
Год окончания: 2024

Женьшень настоящий имеет мировую известность, как ценное лекарственное растение, его значимость для всего Дальневосточного региона не вызывает сомнений. Среди всех видов рода Panax вид P. ginseng характеризуется самой высокой биологической активностью, в результате природные запасы этого ценного вида подвергаются чрезмерной эксплуатации. В начале двадцатого века ареал P. ginseng занимал обширные территории российского Приморья, Кореи и Китая. Теперь это растение практически исчезло из лесов Кореи и Китая. В настоящее время единственным естественным местообитанием P.ginseng является Приморский край Дальнего Востока России. Растения женьшеня, произрастающие на территории Китая и Южной Кореи, имеют неясное происхождение и могут рассматриваться как растения, уже давно измененные искусственным отбором. На сегодняшний день, официально, не ведется промышленное заготовление корней. Из года в год в Приморском крае анализ конфискованного материала показывает, что количество высокосортных корней в заготовках ежегодно падает, а доля корней худшего качества растет (2000- 2018). Эти данные свидетельствуют о прогрессирующем истощении природных популяций женьшеня. Согласно данным Красной книги Приморского края женьшень находится "на грани исчезновения". Следует ожидать, что скоро станут невозможны не только промышленные заготовки и получение качественного семенного материала, но и восстановление вида вследствие утраты его генетического разнообразия. Кроме того, это может привести к снижению качества сырья, истощению почв, используемых для плантационного возделывания и увеличению длительности роста корней для получения определенного спектра гинзенозидов при выращивании на территории ДВ в фармакологических и иных целях. В настоящее время быстро развивающейся областью экологического природопользования является процесс замены минеральных удобрений моно-, бинарными и поликомпонентными микробными препаратами на основе эндофитов (микроорганизмы, которые живут во внутренних тканях растений, не причиняя вреда растениям-хозяевам) растений. Эндофиты могут способствовать росту растений-хозяев и действовать как агенты биологической борьбы против патогенов растений. Подобные взаимодействия растений и микробов характерны для естественных методов устойчивого ведения сельского хозяйства и охраны окружающей среды, они активно развиваются и используются в современном мире. В связи с этим наиболее перспективным на данный момент является изучение микробного сообщества на корнях и наземных частях растений женьшеня и влияние микробного состава на продуктивность и выживаемость корней. Подобная работа будет проводиться на ДВ впервые.
Участник(и):
Русакова Дарья Александровна
Моршнева Александра Викторовна
Вологжанина Юлия Владимировна
Результаты:
2023
В 2023 г. сформировали грядки на уже имеющейся на основе договора безвозмездной аренды с 2010 территории: п. Васильковка (2022 год сформирована); и п. Шумный (грядка сформирована в мае 2023 (Приморский край) (рис. 1). Эти районы по климатическим условиям находятся в более подходящих районах для выращивания женьшеня и реже подвергаются негативному климатическому воздействию (наводнения и проливные дожди). В п. Васильковка в мае 2023 на грядку были пересажены корни 1 года по методике (Павленко, Юров, 1975) в количестве 200 шт. На грядку в п. Шумный стратифицированные семена высажены в сентябре 2023. В 2020 году была создана опытная грядка с растениями разных популяции женьшеня п. Васильковка. В средней части грядки была выбрана площадь 120 см на 150 см2 и обработана опытными микробным препаратом, созданным в лаборатории почвоведения и экологии почв ФНЦ Биоразнообразия ДВО РАН для повышения урожайности зерновых культур, состоящим из трех бактериальных штаммов (Pseudarthrobacter equi S2+ Pantoea agglomerans Ф19+ Acinetobacter johnsonii A1). В июле 2023 года были сняты морфометрические параметры растений (рис. 2). Были отобраны 3 популяции корейские красные (КК), дальнереченские (ДР) и уссурийские красные (УСС). На опытном участке 120 х150 см2 взошло 30 растений, в то время как на участке, обработанном бактериальным препаратом, 56 растений. При этом обработанные растения раньше вступили в генеративную фазу: 18 растений сформировало завязи в количестве от 3 до 21 шт., в то время как количество плодоносящих растений на опытном участке было всего три с количеством завязей до 3 шт. (это согласуется с литературными данными Грушвицкий, 1961). Ростовые характеристики в опыте также превышали контрольные по всем трем популяциям и даже отличались достоверно (рис. 2). Несмотря на это, необходимы дополнительные исследования, в результате опыт повторили в 2023 году на вновь созданных грядках с двухлетними растениями разных популяций в п. Васильковка и в п. Шумный в октябре обработали семена (300 шт), высаженные на грядку. За 2023 год участки были обработаны 2 раза (июль, октябрь).   Был проанализирован качественный и количественный состав вторичных метаболитов (гинзенозидов) корней женьшеня, выращенных на плантации (дальнереченская популяция). Кроме того, в работе использовали морфогенные линии женьшеня полученые ранее в лаборатории биотехнологии ФНЦ Биоразнообразия ДВО РАН из корней дальнереченкской популяции для анализа возможности детекции минорных гинзенозидов. ВР-ВЭЖХ-МС хроматографические профили по полному ионному току показаны на (рис. 3). Первоначально было изучено хроматографическое и масс-спектрометрическое поведение 14 стандартных образцов, из которых 12 (G-Rg1, G-Re, G-Rf, NG-R2, G-Rb1, G-Rg2, G-Rc, G-Ro, G-Rb2, G-F1, G-Rd, G-F2) были ранее выделены и охарактеризованы в Федеральном государственном бюджетном учреждении науки Тихоокеанском институте биоорганической химии им. Г.Б. Елякова Дальневосточного отделения Российской академии наук. Еще два соответствовали двум эталонным стандартам G-Rg3 и G-Rh1 компании “Sigma-Aldrich”. На этом этапе были оптимизированы параметры ВЭЖХ метода, такие как температура термостата аналитической колонки, состав подвижной фазы и профиль градиентного элюирования. Муравьиная кислота, используемая как добавка к подвижной фазе, не только улучшила разрешение и форму хроматографических пиков, но также усилила ионизацию, вызвала образование ионов-аддуктов, что облегчило обнаружение и подтверждение молекулярного иона. Для идентификации компонентов экстрактов было решено использовать масс-спектрометрию высокого разрешения (с ошибкой определения брутто-формулы не более 8 мДа) с одновременной регистрацией отрицательных и положительных ионов (хромато-масс-спектрометр Shimadzu LCMS-IT-TOF). В режиме полного сканирования гинзенозиды определялись как депротонированные ионы [M-H]- и ионы – аддукты с муравьиной кислотой [M+HCOO]- (всегда для нейтральных гинзенозидов). Это часто подтверждалось обнаружением натриевых аддуктов [M+Na]+ (табл. 1, Дополнительные материалы), причем соотношения интенсивностей молекулярных ионов и ионов-аддуктов были индивидуальны для каждого компонента и сохранялись от анализа к анализу. Отрицательный режим сканирования оказался более чувствительным, тогда как МС/МС спектры показали больше информации о фрагментации ионов предшественников состава [M-H]- и/или [M+HCOO]-. Для получения МС/МС спектров в настоящем исследовании использовали масс-спектрометрию низкого разрешения (масс-спектрометр низкого разрешения Bruker HCT ultra, функционирующий в режиме регистрации отрицательных ионов и автоматическом выборе ионов-прекурсоров), благодаря его высокой чувствительности и хорошо различимым масс-спектрам в этом режиме. Характерный путь фрагментации стандартных образцов был полностью изучен и продемонстрировал картину, как правило, соответствующую последовательной потере гликозидных остатков до образования ионов сапогенина/агликона (Agl) [Agl-H]-. Условия фрагментации были оптимизированы таким образом, чтобы получить сигнал ионов сапогенина для каждого компонента за один цикл анализа. Соответственно различные группы гинзенозидов хорошо дифференцировались и характеризовались при помощи МС/МС спектров. Основные группы гинзенозидов, обнаруженных в экстрактах ‒ производные протопанаксадиола (PPD-тип), протопанаксатриола (PPT-тип) и олеаноловой кислоты (Ole-тип). При МС/МС-фрагментации эти гликозиды продуцировали ионы сапогенинов: [PPD-H]- с m/z 459 (C30H51O3), [PPТ-H]- с m/z 475 (C30H51O4) и [Ole-H]- с m/z 455 (C30H47O3), соответственно. Также сахарные цепочки легко идентифицировались путем определения молекулярной массы последовательных нейтральных потерь от ионов [M-H]- (и/или [M+HCOO]-) до ионов сапогенина [Agl-H]-, обычно это 162, 146, 132 и 176 Да, что в основном соответствует элиминированию дегидрированных остатков глюкозы (Glc), рамнозы (Rha), пентозы (Pent), арабинопиранозы (Arap), арабинофуранозы (Araf) или ксилозы (Xyl) и глюкуроновой кислоты (GlcA), соответственно. Необходимо отметить, что существует множество изомерных форм гинзенозидов. В частности, в изученных образцах были выявлены несколько гликозидов, которые имели близкие (в пределах ошибки в 8 мДа) значения m/z и идентичную молекулярную формулу. Только с помощью анализа МС/МС для этих гликозидов удалось выявить различия в структуре и провести их разграничение на основании гипотетического строения агликонов. Примечательно, что некоторые тритерпеновые гликозиды типа окотиллола (Oct-тип) также были обнаружены и идентифицированы в исследованных образцах. МС/МС спектры соединений № 6, 10 и 15 содержали сигнал иона с m/z 491 (C30H51O5), соответствующий депротонированному агликону окотиллолового типа [Oct-H]-. Также восемь производных олеаноловой кислоты были обнаружены в исследуемых экстрактах (пики 34, 35, 41, 47, 52, 64, 65, 67). В режиме полного сканирования гинзенозиды типа Ole обнаруживали интенсивные сигналы депротонированных ионов [M-H]- и натриевых аддуктов [M+Na]+. В результате всей проделанной работы в неочищенных экстрактах суммарных образцов нативных корней и морфогенных линий P. ginseng были идентифицированы 66 гинзенозидов, из которых 13 компонентов (пики № 7 (G-Rg1), 8 (G-Re), 21 (G-Rf), 24 (NG-R2), 26 (G-Rb1), 28 (G-Rg2), 31 (G-Rh1), 32 (G-Rc), 35 (G-Ro), 37 (G-Rb2), 48 (G-F1), 50 (G-Rd) и 63 (G-F2)) были идентифицированы путем сравнения их хроматографического и масс-спектрометрического поведения с эталонными стандартами, а остальные соединения были определены путем сравнения эмпирических молекулярных формул, а также информации о фрагментации и последовательности их удерживания на обращенной фазе с данными из литературы. Все хроматографические и масс-спектрометрические данные, использованные для идентификации, собраны в табл. (Дополнительные материалы, опубликовано Горпенченко и др., 2023). На основе идентификации был проанализирован качественный состав разделенных образцов в сравнении с образцом, полученным из нативных корней. Качественный состав плантационных корней и корней в культуре ткани практически совпадал и был представлен 47 соединениями. Базальный каллус PgR-calli содержал 50 гинзенозидов, представленных в плантационных и культивируемых in vitro корнях, при этом корни in vitro содержали более разнообразные формы Ole-типа соединений (пик № 41, 47, 52, 65, 67), не обнаруженных в плантационных корнях. Самым бедным по разнообразию гинзенозидов являлся морфогенный базальный каллус, из которого формировались листья. В нем было найдено всего 35 гинзенозидов. При этом он содержал достаточно редкие для нативных корней гинзенозиды олеанолового и окатиолового типов (рис. 4). Для изучения распределения индивидуальных гинзенозидов в нативных корнях и различных тканях, и органах морфогенных клеточных линий был использован полуколичественный анализ с применением метода внешней калибровки относительно стандартных образцов гинзенозидов G-Rg3 и G-Rh1. Результаты представлены на рис. 4. Суммарное содержание гинзенозидов в плантационном 6-летнем корне и клеточных линиях составляло: в интактных корнях – 18.13 ± 2.72 мг/г сухого веса.  в корнях ризогенной клеточной линии – 17.24 ± 3.45 мг/г сухого веса; в базальном каллусе ризогенной клеточной линии 18.29 ± 2.74 мг/г сухого веса; в листьях геммогенной линии – достигало достоверно максимальных значений 26.65 ± 4.78 мг/г сухого веса; в базальном каллусе геммогенной клеточной линии было достоверно минимальным – 8.26 ± 1.07 мг/г сухого веса (рис. 3). Кроме общего содержания гинзенозидов, было проанализировано соотношение типов PPD и PPT (PPD/PPT) и соотношение нейтральных гинзенозидов к малонил-гинзенозидам (табл. 1). Установлено, что соотношение PPD-типа и PPT-типа гинзенозидов было близко к единице, что отражало примерно равное количество данных веществ во всех образцах, за исключением инициального каллуса, формирующего листья (PgG-calli). В этом образце (PgG-calli) производные протопанаксадиола практически отсутствовали и были представлены только 4 гинзенозидами (рис. 4), при этом 3 из них находились в малонилированной форме (m-PPD). Интересен и тот факт, что содержание малонил-эфиров гликозидов протопанаксадиола было одинаково с нейтральными формами этих соединений, в то время как малонилированные производные протопанаксатриола встречались в существенно меньшем количестве (рис. 4). Необходимо отметить, что морфогенные клеточные линии повторяют не только паттерн качественного состава гинзенозидов, по сравнению с отдельными частями нативных корней, но и увеличивают их разнообразие и количество, часто за счет накопления промежуточных соединений. При этом, несмотря на то, что в нативных корнях редко наблюдают наличие редких гинзенозидов, в плантационном корне было отмечено присутствие всех групп соединений.   3. Объектами исследования являлись образцы, отобранные с почвы, корней и листьев женьшеня (Panax ginseng C.A. Mey) из разных мест произрастания. В работу было взято 2 образца: образец почвы, ризосферы и ризопланы растения, растущего под пологом леса, более 15 лет (контрольный образец №4); образец № 11 - почва, ризосфера и ризоплана растения дальнереченской популяции на контрольном участке опытной грядки. Для микробиологических исследований образцы почвы отбирали стерильными инструментами и помещали в стерильный упаковочный материал согласно ГОСТ 17.4.4.02-84. Образцы были упакованы в сумки-холодильники и доставлены в лабораторию для незамедлительного исследования. В лабораторных условиях образцы, собранные под пологом леса, где растения женьшеня произрастают уже более 15 лет и образцы с грядки на которой проводится эксперимент, подвергались стандартной методике выделения чистых культур микроорганизмов.  Образцы почв, ризосферы, ризопланы корней высевали на агаризованные питательные среды (ГРМ-агар – для аммонификаторов; крахмало-аммиачный агар – для бактерий, использующих минеральные формы азота; Эшби – для бактерий, способных к азотфиксации, минимальную селективную среду по Дунайцеву – для бактерий способных к фосфатрастворению; Сабуро – для выделения грибов; Александрова – для силикатных бактерий) для получения наибольшего разнообразия чистых культур микроорганизмов. Всего было выделено и отправлено на хранение 109 штаммов микроорганизмов, среди которых 48 – грибы и 61 – бактерии  (рис. 5). Для определения морфологии клеток и типа клеточной стенки бактериальных изолятов применяли метод окраски по Граму. Всего в коллекции оказалось 61 штамм, из них 39 штаммов грамположительных и 22 - грамотрицательных. Отмечая морфологические особенности, можно сказать, что большинство анализируемых микроорганизмов имеют форму палочек разнообразной длины, среди которых также имелись два грам положительных спорообразующих штамма. Преобладали мелкие грам положительные и грам отрицательные палочки. Было выявлено 3 штамма, имеющих форму кокков, среди которых один штамм имел форму диплококков. Наблюдались штаммы микроорганизмов, в которых палочки являются одиночными (4 грам положительных, 8 грам отрицательных), в которых палочки собираются по двое (5 грам положительных, 4 грам отрицательных), в которых палочки собираются по трое и более (3 грамположительные). В результате исследования была создана коллекция штаммов микроорганизмов почвы женьшеня (рис. 5). Геномную ДНК из культур бактерий выделяли с помощью коммерческого набора “НК-сорбент Base” (Литех, Россия) согласно протоколу производителя. Анализ фрагмента гена 16S рРНК проводили с использованием набора реагентов фирмы Биолабмикс “БиоМастер HS-Taq ПЦР-Color (2×)” (Россия) и универсальных бактериальных праймеров 27F (5’–AGAGTTTGATCATGGCTCAG–3’) и 1350R (5’–GACGGGCGGTGTGTACAAG–3’) (Lane et al., 1985). Амплификацию осуществляли на приборе “Т100 Thermal Cycler” (BioRad, США) в следующем режиме: 94°C – 4 мин (1 цикл); 94°C – 60 сек, 48°C – 60 сек, 72°C – 90 сек (5 циклов); 92°C – 60 сек, 50°C – 110 сек, 72°C – 90 сек (10 циклов); 92°С – 60 сек, 52°С – 60 сек, 72°С – 60 сек (10 циклов); 92°C – 60 сек, 54°C – 60 сек, 72°C – 110 сек (10 циклов); 72°C – 10 мин (1 цикл) (Денисова и др., 1999). Полученные ПЦР-продукты разделяли в электрофорезной камере (при напряженности поля около 2 В/см) в 1% агарозном геле с добавлением этидиум бромида, результаты учитывали на трансиллюминаторе под ультрафиолетовым излучением. Для очистки продуктов амплификации от остатков реакционной смеси использовали набор ExoSAP-IT Express (Thermo FS, США). ПЦР-продукты секвенировали по методу Сэнгера, используя набор реактивов “Big Dye Terminator v.3.1 Cycle Sequencing Kit” (Thermo FS, США) для подготовки нуклеотидных последовательностей к прочтению на генетическом анализаторе Нанофор 05 (Синтол, Россия). Филогенетический анализ осуществляли путем поиска гомологичных последовательностей в международном банке данных (GenBank) с помощью программы BLAST (Altschul et al., 1997) (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast). Редактирование последовательностей выполнено в редакторе BioEdit; для выравнивания последовательностей использовали алгоритм программы CLUSTAL W (http://www.genebee.msu.su/clustal). Филогенетическое дерево построено с использованием метода ближайших соседей (neighbor-joining) на основе алгоритма Kimura two-parameters в программе MEGA 7 (Kumar et al., 2016). Показатель достоверности порядка ветвления определяли на основании bootstrap – анализа 100 альтернативных деревьев. Была выделена ДНК и секвенирован фрагмент гена 16S РНК по Сенгеру для идентификации всех полученных штаммов микроорганизмов двух образцов: растений, выросших в естественных условиях, под пологом леса и культивируемых растений, выросших на грядках. По результатам секвенирования и морфологическим данным всего было идентифицированно 44 штамма бактерий. Построены филогенетические деревья (Рис. 6, 7). Можно отметить, что самым часто встречающимся родом микроорганизмов является Pseudomonas. Данный род встречается повсеместно, а в рамках нашей работы отмечено, что представителей данного рода оказалось больше всего в ризосфере плантационного женьшеня. Считается, что ризосферные микроорганизмы служат важными индикаторами функции почвы. В месте прилегания корней ризосферы к почве растений происходят сложные биологические и экологические процессы, включая круговорот питательных веществ, развитие патогенеза и защиту растений эндофитными микроорганизмами. Микробное сообщество ризосферы может иметь важные последствия для роста, питания и здоровья растений в агроэкосистемах. К штаммам, предполагающим дальнейшее исследование, относится Sphingomonas paucimobilis. Он является условно патогенным и в рамках нашей работы может играть ключевую роль. Штамм КП4ПА2 идентифицировать на данном этапе не удалось. Также следует сказать, что в результате идентификации многие штаммы микроорганизмов оказались повторяющимися. Дальнейшее исследование предполагает расширение коллекции анализируемых штаммов и их сбор не только с корня женьшеня, но и со стеблей, почвы и отпечатков листьев. Необходимо проведение тех же методов исследования, а также построение филогенетического дерева в рамках рассмотрения анализируемых микроорганизмов. Образец корня женьшеня с плантационной грядки содержит в микрофлоре почвы значительно большее количество штаммов бактерий, чем образец, произрастающий под пологом леса. Штаммами микроорганизмов, которые встречаются в почве у каждого образца, являются только Pseudomonas koreensis, микроорганизм, обладающий высокой антагонистической активностью по отношению к фитопатогенным видам микромицетов, активно распространен в ризосфере сахарного тростника и в насыпной почве и Lysinibacillus fusiformis, облигатный анаэроб, который также выделяют из корней яблони в северной Италии, обладает противогрибковой активностью в отношении различных грибковых патогенов. При изучении таксономического положения изолятов бактерий, выделенных из почв под пологом леса и грядок; ризосферы и ризопланы корней женьшеня выявлено, что подавляющее большинство бактерий относилось к филуму Bacillota рода Bacillus (рис. 6, 7, 8). Минимальное разнообразие культивируемых бактерий было выявлено в образце №4 взятом из-под полога леса. Штаммы 54, 56, 57 имели высокую степень родства (99.73%, 99.07%, 99.55%, соответственно) с гомологами OP810793 Bacillus sp. (Индия), MF111955 (Китай), LC202628.  Bacillus sp. (Бангладеш), соответственно. И характеризовались как мелкие грамположительные палочки. Они присутствовали во всех исследуемых образцах. Отличительными штаммами для образца с грядки являются Bacillus thuringiensis – почвенная бактерия, образующая споры во время стационарной фазы своего цикла роста. Споры содержат кристаллы, преимущественно содержащие один или несколько белков Cry и/или Cyt (также известных как δ-эндотоксины), которые обладают мощной и специфической инсектицидной активностью. Erwinia sp – фитопатоген, поражающий надземные и подземные части растений, первоначально выделен в Японии из грушевых деревьев с симптомами бактериального ожога побегов. Pseudomonas mohnii – бактериальный эндофит, принадлежит к основным сообществам корневого микробиома томата, обладает антимикробной активностью, Lysinibacillus parviboronicapiens – почвенная спорообразующая бактерия, наблюдается также в почве района Хисарджик в провинции Кютахья, Турция. Pseudomonas fragi– протеолитическия психротолерантная бактерия. В последние несколько десятилетий во всем мире с P. fragi были связаны многочисленные проблемы с порчей пищевых продуктов, при этом пораженные продукты, включая охлажденное мясо, хранились в аэробных условиях, в вакууме и в условиях модифицированной атмосферы. Lysinibacillus sphaericus – почвенная бактерия, обладающая инсектицидной активностью против личинок комаров. Rahnella sp.  – род бактерий, широко распространенный в окружающей среде (вода, почва, ризосфера сельскохозяйственных культур, кишечник улиток) и иногда выделяющийся из пищевых продуктов и клинических образцов человека. Продуцирует стимулирующие рост растений вещества, такие как индол-3-уксусная кислоту, сидерофор, 1-аминоциклопропан-1-карбоновую дезаминазу, а также солюбилизированный неорганический фосфат. Pseudomonas putida – распространенная почвенная бактерия, синтезирующая фитогормон – индолуксусную кислоту (ИУК). Отличительными штаммами для образца почвы корня женьшеня, собранного под пологом леса, являются Lysinibacillus boronitolerans – спорообразующая бактерия, являются потенциальными средствами биологической борьбы с болезнями, поражающими какао. Обычно встречается в почве и была выделена из тканей растений, из ферментированных продуктов семян растений и даже из образцов печени иглобрюха. Sphingomonas paucimobilis – представляет собой грамотрицательную палочку, не ферментирующую глюкозу, которая широко распространена в природной среде. Для людей является патогеном и может вызывать инфекции как у здоровых людей, так и у людей с ослабленным иммунитетом. Хотя это микроорганизм с низкой клинической вирулентностью, инфекция, вызванная S. paucimobilis, может привести к септическому шоку. Stenotrophomonas rhizophila – бактерия, широко распространенная в ряде мест, связанных с растением хозяином, от стеблей, листьев или ризосферы, до корней и почвы. S. rhizophila способен окислять важный элемент корней растений – ксилозу и обладает противогрибковыми свойствами, Pseudomonas baetica – грамотрицательная бактерия, первоначально выделеная из печени больной морской камбалы. Является патогеном. Генотипический и фенотипический анализы данного штамма показывают, что он устойчив к осмотическому стрессу и окситетрациклину.   Помимо образцов почвы, которые были использованы для анализа микробного состава, исследовали образцы почв, отобранные с грядок с различным возрастом культивирования растений женьшеня от 4 до 20 лет. Всего было взято 11 образцов почвы на которых произрастали растения женьшеня: №1 - красноплодные растения Корея (КК), №9 - корея желтоплодный (КЖ), №3 китайская популяция (КП), №2 уссурийская популяция (УСС), №6 уссурийская популяция, где растения росли 4 года (УСС4), №7 хасанская популяция (ХП), №8 синегорская популяция (СГ), №10 дальнереченская популяция (ДР), №11 дальнереченская популяция (ДР4); №4 почва из тайги (контроль полог леса 1 (ПЛ1)), №5 почва из тайги (контроль полог леса 2 (ПЛ2)) (табл. 1). Реакция среды почвенного раствора (рН) определялась в соответствии с рекомендациями ГОСТ 26423-85 (Почвы. Методы определения удельной электрической проводимости, рН и плотного остатка водной вытяжки) и ГОСТ 26583-85 (Почвы. Определение рН солевой вытяжки, обменной кислотности, обменных катионов, содержания нитратов, обменного аммония и подвижной серы методами ЦИНАО). Уровень реакции среды почвенного раствора в каждом анализируемом образце определялся в 3-х-кратной аналитической повторности. Показатель pH H2O отражает актуальную кислотность почвенного раствора. Основная масса образцов почв грядок (№ 1, 2, 3, 4, 5, 6, 9, 11) имеет слабокислую реакцию среды. Кислотность образцов почв с грядок № 7, 8 характеризуется как нейтральная. По значению обменной кислотности (pH KCl) образцы почвы № 1, 2, 3, 4, 5 относятся к кислым, образцы почвы № 6, 9, 10, 11 к среднекислым, образцы почвы с грядок № 7, 8 к слабокислым (табл. 1). Элементный состав почвенных образцов определялся методом энергодисперсионной рентгенфлуоресцентной спектроскопии (EDX). Определение содержания элементов проводили на анализаторе EDX 800HS-P (Shimadzu, Япония) оснащенным родиевым катодом в формате количественного анализа, в вакуумной среде с использованием государственных стандартных образцов сравнения (ГСО 901-76, ГСО 902-76, ГСО 903-76, ГСО 2498-83, ГСО 2499-83, ГСО 2500-83, ГСО 2507-83, ГСО 2509-83). Параметры измерения: напряжение – 50 kV, сила тока – 100 mA, время определения – 300 с, "мертвое" время – 20%, размер коллиматора – 10 мм.  Среднее содержание элементов, рассчитанное из значений, полученных для 3-х аналитических повторностей измерения каждого опытного почвенного образца приведено в Таблицах 2, 3. В работе были использованы методики: М-02-0604-2007. Методика выполнения измерений массовой доли кремния, кальция, титана, ванадия, хрома, бария, марганца, железа, никеля, меди, цинка, мышьяка, стронция, свинца, циркония, молибдена, в порошковых пробах почв и донных отложений рентгеноспектральным методом с применением энергодисперсионных рентгенофлуоресцентных спектрометров типа EDX фирмы Shimadzu. Свидетельство об аттестации МВИ № 242/84 – 2007; ПНД Ф 16.1.42-04 (издание 2010 г.) Методика выполнения измерений массовой доли металлов и оксидов металлов в порошковых пробах почв методом рентгенофлуоресцентного анализа. Было определено общее (валовое) содержание элементов в образцах почв. Cодержаниe макроэлементов в почвенных образцах соответствует уровню содержания элементов в органических горизонтах почв буроземного ряда (табл. 2). Содержание макроэлементов и общих форм углерода (Собщ) в представленных семи почвенных образцах №2-5,8,9,11 соответствует уровню содержания элементов в гумусово-аккумулятивных и переходных к минеральным горизонтам зональных типов почв Приморского края, не используемых в сельскохозяйственном производстве. Образец почвы с грядки № 3 отличается от всех остальных более высоким содержанием C, MnO и Fe2O3. но, в целом ни какого превышения по содержанию макроэлементов в почвах, относительно почв дальневосточного региона, не обнаружено (табл. 2). Содержание большинства исследованных микроэлементов указывает на превышение среднего регионального значения, что указывает на повышенный уровень их содержания в опытных образцах (табл. 3). При таком уровне содержании Cu в почвах необходимо обратить внимание на процессы проявления фитотоксичности у выращиваемых растений (у высших растений это может выражаться в угнетении роста, отмирании почек и т,д.). Содержание Cu превышает уровень среднерегионального значения до 30,5 раз, что говорит об использовании медного купороса для травли грибковых заболеваний на грядках. Высокое превышение отмечено в образцах с грядок № 1-3 и № 6-11. Содержание Rb превышает уровень среднерегионального значения в 1,7-2,4 раза, концентрация Cr, Co и Zn в 1,2–1,8 раз, уровень Sr и Zr в 1,1-1,3 раза. Таким образом, исходя из данных о химическом составе почв грядок можно утверждать, что они уже более 20 лет бесконтрольно используются в сельхоз. обращении. Повышенное содержание Rb и Zr, как правило, не оказывает значительного влияния на питание растений, так как эти элемегты содержатся в составе первичных почвенных минералов. Все остальные элементы оказывают активное влияние на питание растений и поступают через корни в растительные ткани.
2024
В 2024 г. продолжились эксперименты по влиянию бактериального препарата (БП) лаборатории почвоведения и экологии почв ФНЦ Биоразнообразия ДВО РАН созданного для повышения урожайности зерновых культур и состоящего из трех бактериальных штаммов (Pseudarthrobacter equi S2+ Pantoea agglomerans Ф19+ Acinetobacter johnsonii A1) на всходы и растения женьшеня, а также почвы на которых культивируется женьшень. Всхожесть стратифицированных семян, посаженных в мае 2024 года на участке в Чугуевском районе в 2024 году составляла в контроле 30,61%, при обработке БП 41,84%. На участке Спасского района, контрольные цифры всхожести составляли 40%, в опыте 58,33%. В целом всхожесть семян была низкая из-за неблагоприятных погодных условий 2024 года. В Спасском районе также хорошо взошли семена корейских красноплодных растений (66%). На второй сезон после обработки БП были измерены ростовые параметры растений и подсчитано количество завязавшихся семян (Рис. 2.1, 2.2). Наблюдалось увеличение количества растений с большим количеством листьев. Это может говорить об ускорении развития растений бактериями, находящимися в препарате, также, как и в случае зерновых культур. В 2024 году наблюдалась стимуляция плодоношения у растений Хасанской популяции, в то время как на гистограмме мы наблюдаем снижение завязываемости семян. Такое значение, вероятно, не достоверно, т.к. у двух растений Синегорской популяции погибли цветоносы с уже сформированными семенами в количестве 31 и 36 шт (Рис. 2б). В конце сентября 2024 года были выкопаны корни СГ популяции и получены морфометрические данные корней. На участке, обработанном БП наблюдалось увеличение веса и длины корней, увеличивалось количество боковых корешков (Рис. 2.3). С помощью высокоэффективной жидкостной хроматографии был проанализирован состав основных вторичных метаболитов – гинзенозидов. Хроматографическое и масс-спектрометрическое поведение основных стандартов гинзенозидов и самих метаболитов было представлено ранее (Горпенченко и др., 2023). Всего было обнаружено и проанализировано 22 вещества (Рисунок 3.1, 3.2, Таблица 3.1). В контроле суммарное количество гинзенозидов было 10,98 мг/г сухого веса, в опыте суммарное количество веществ равнялось 25,27 мг/г сухого веса. Продолжились опыты по выделению чистых бактериальных культур штаммов ризосферной почвы корней женьшеня растущих в лесу; на грядках; и грядках, обработанных БП. Всего было выделено и сохранено 61 штамм бактерий. Данные, основанные на морфологическом анализе и секвенированных последовательностях 16S ДНК, показали, что штаммы принадлежали к трем доминирующим филумам: Bacillota, Pseudomonadota и Actinomycetota. В то же время соотношение филумов, содержащих изолированные культивируемые штаммы в ризосферной почве из леса и ризосферных образцах с участков, было сопоставимым (53,6%, 28,6%, 17,8%) и (60%, 15%, 25%), соответственно. Различия наблюдались на уровне родов каждого филума (Рисунок 4.1а). Основное различие наблюдалось в штаммах, принадлежащих филуму Pseudomonadota, за счет К солюбилизирующей группы. В то же время выделить культивируемые штаммы родов этого филума относящихся к этой группе из почв грядок не удалось. Численность микроорганизмов группы солюбилизации калия также уменьшилась на грядках (Рисунок 4.2б). При этом в почвах леса наблюдался недостаток как общем, так и в доступном К по сравнению с грядками (Таблица 5.2, 5.4). Что возможно связано с активным потреблением данного элемента лесной растительностью. В основном культивируемые штаммы бактерий, способные к минерализации азота принадлежали к двум филумам Actinomycetota и Bacillotа. При этом отмечено, что количество бактерий группы минерализации азота в лесной почве было в 25 раз больше, чем на почвах грядок (Рисунок 4.1б). Содержание доступного фосфора в лесу было очень низким по сравнению с его количеством на грядках. Все фосфатсолюбилизирубющие штаммы бактерий были отнесены к двум филумам Bacillota и Pseudomonadota. Уровень общего азота практически не отличался в лесу и на грядках, в то время как количество доступного азота на грядках значительно снижалось по сравнению с лесом. Изменения в филлуме Bacillota, штаммы которых преобладали в этой функциональной группе, несмотря на высокую представленность в обоих образцах касались рода Bacillus. Среди культивируемых штаммов интересны редкие штаммы, отсутствующие на грядках, принадлежащие к основным функциональным группам, поскольку они дают возможность управлять, а во многих случаях и возрождать микробиом леса и подстилки (Рисунок 4.3). Все последовательности отобранных штаммов занесены в базу данных SRA NCBI (к примеру: Achromobacter sp 50S1NF-PQ659770; Ensifer sp 49S1NM-PQ659772 и др.).  Также одновременно с измерениями морфометрических параметров растений, было исследовано количество грибов и бактерий различных функциональных групп на контрольном и опытном участках грядок (Рисунок 4.2). Анализ количества колоний на специализированных средах выявил увеличение активности микробиома не только ризосферных почв, но и экзосферы корней женьшеня. Необходимо отметить, что бактериальный штамм оказал стимулирующий эффект не только на бактерии основных функциональных групп в ризосферных почвах, но и на активность грибов. В то время как активность грибов экзосферы корней из почв, обработанных бактериальным препаратом (БП) имела обратный эффект – снижалась. Наибольший эффект БП оказал на группу аммонификаторов (разложения азотсодержащих соединений) и азотфиксаторов (фиксация молекулярного атмосферного азота). Исходя из результатов, при обработке БП количество бактерий в грядках увеличивается, но не доходит до значений в лесной почве (Рисунка 4.1, 4.2). Образцам почвы и грядкам присвоили названия согласно основным крупным популяциям и изменили нумерацию для удобства обсчёта и анализа согласно литературе (Журавлев и др., 2008). Повторно было взято 11 образцов почвы на которых произрастали растения женьшеня (Таблица 5.1) и были добавлены пробы почв: №12 – почва грядки со старыми растениями Синегорской популяции из Чугуевского района (BM(Sh)-O) обработанные бактериальным препаратом; №13 - почва грядки с молодыми растениями Синегорской популяции (BM(Sh)-Y) обработанные бактериальным препаратом; №14 - почва грядки без растений подготовленная для посадки (BM(Sh)-F). Реакция среды почвенного раствора (рН) определялась в соответствии с рекомендациями ГОСТ 26423-85 и ГОСТ 26583-85. В 2024 году были повторно замерены показатели кислотности. Интересно, что все тенденции сохранились, не смотря на некоторое изменение в показателях. Основная масса образцов почв грядок (№3, 4, 5, 7-11) имела все такую же слабокислую реакцию среды с небольшим повышением. К этим образцам приблизилось значение образцов почв из-под старых красноплодных растений из Кореи (KoR-O). В нашем исследовании SОМ (гумус) незначительно отличался между лесом и грядками и не зависел от рН почвы (Рисунок 5.1). У всех образцов было измерено количество доступных форм основных элементов P, N и (Таблица 5.4). Значения доступного фосфора и калия были низкими в лесных почвах и грядках. Вероятно, высокие значения SOM на грядках со старыми растениями связаны с установлением баланса доступных форм углерода.  Элементный состав почвенных образцов определялся методом энергодисперсионной рентгенфлуоресцентной спектроскопии (EDX). Среднее содержание элементов, рассчитанное из значений, полученных для 3-х аналитических повторностей измерения каждого опытного почвенного образца приведено в Таблицах 5.1; 5.2. На всех участках содержание макроэлементов в образцах почв соответствует уровню содержания элементов в верхней части профилей буроземных почв (Dystric Cambisol), развитых на основных породах в естественных ландшафтах регионов исследования. В 2024 году содержание MgO, Al2O3, P2O5, K2O, MnO в ризосферных почвах было ниже в лесных образцах, чем на обрабатываемых участках (Таблица 5.1).  Было обнаружено, что почвы, отобранные с лесных участков, имеют микроэлементный состав, типичный для почв, сформированных в естественных ландшафтах исследуемого региона (Таблица 5.2). Содержание V, Ni, Co, Zr и Mo в почвах участков соответствовало таковому в верхних горизонтах лесных почв. Основным отличием в микроэлементном составе также, как и в предыдущий год, между исследованными образцами почв было увеличение содержания Cu в почвах участков. Результаты показали, что общее содержание Cu в почвах участков Спасского района было в выше, чем в лесных почвах и в почвах Чугуевского района, но ниже чем показатели 2023 года. Анализ элементного состава корней не выявили превышения наличия меди в корнях с грядок (Таблица 5.5). Кроме того, этот результат свидетельствует о том, что накопление Cu в почвах участков представляет собой экологический риск для почвенной среды. Содержание Zn, Rb и Pb в большинстве образцов почв участков оказалось выше, чем в лесных почвах. В Чугуевском районе таких высоких значений микроэлементов не наблюдалось (Таблица 5.3).
Публикации:

Хромато-масс-спектрометрический анализ гинзенозидов в морфогенных клеточных линиях женьшеня настоящего Panax ginseng C.A. Meyer

Горпенченко Т.Ю., Григорчук В.П., Маханьков В.В., Кочкин Д.В., Вологжанина Ю.В., Ханды М.Т., Чернодед Г.К., Журавлев Ю.Н.

В журнале Физиология растений

DOI: 10.31857/S0015330323601036

HPLC-MS Analysis of Ginsenosides in Morphogenic Cell Cultures of Ginseng (Panax ginseng C.A. Meyer)

Gorpenchenko T.Yu., Grigorchuk V.P., Makhankov V.V., Kochkin D.V., Vologzhanina Yu.V., Khandy M.T., Chernoded G.K., Zhuravlev Yu.N.

В журнале Russian Journal of Plant Physiology

DOI: 10.1134/S1021443723603087

Changes in the Composition and Properties of Cultured Bacterial Strains of Ginseng Rhizosphere According to Soil Characteristics in the Forest and Plots.

Gorpenchenko T.Y., Sidorenko M.L., Kim A.V., Vologzhanina Y.V., Rusakova D.A., Timofeeva Y.O., Perepelkina P.A., Kazarin V.M., Zhuravlev Y.N.

В журнале Agronomy

DOI: 10.3390/agronomy14123019